Prolin (%)

2.43

1.65

1.98

0.73

1.88

1.81

2.43

2.2 Nisbi molekulyar kütlə paylanmasının kalibrləmə əyrisində istifadə olunan standart maddələr: insulin, mikopeptidlər, qlisin-qlisin-tirozin-arginin, qlisin-qlisin-qlisin

3 Cihaz və avadanlıq

23.2

21.4

22.2

16.1

22.3

20.8

0.93

23.9

27.5

Ümumilikdə, Sustar məhsullarında amin turşularının nisbəti Zinpro məhsullarındakından daha yüksəkdir.

8-ci hissə İstifadənin təsirləri

Müxtəlif mikroelement mənbələrinin gec yumurta qoyma dövründə yumurta qoyan toyuqların istehsal göstəricilərinə və yumurta keyfiyyətinə təsiri

2.40

İstehsal prosesi

1.68

Hədəflənmiş xelat texnologiyası

Kəsmə emulsiyası texnologiyası

Təzyiqli püskürtmə və qurutma texnologiyası

2.42

Soyutma və nəmləndirmə texnologiyası

1.68

Ətraf mühitə nəzarətin qabaqcıl texnologiyası

Əlavə A: Peptidlərin nisbi molekulyar kütlə paylanmasının təyini üsulları

Standartın qəbulu: GB/T 22492-2008

1 Test Prinsipi:

Bu, yüksək performanslı gel filtrasiya xromatoqrafiyası ilə müəyyən edilmişdir. Yəni, məsaməli doldurucudan stasionar faza kimi istifadə edilərək, ayrılma üçün nümunə komponentlərinin nisbi molekulyar kütlə ölçüsündəki fərqə əsasən, 220 nm ultrabənövşəyi udma dalğa uzunluğunun peptid rabitəsində aşkar edilmiş, gel filtrasiya xromatoqrafiyası ilə nisbi molekulyar kütlə paylanmasını təyin etmək üçün xüsusi məlumat emalı proqram təminatından (yəni GPC proqram təminatı) istifadə edilərək, xromatoqramlar və onların məlumatları işlənib, soya peptidinin nisbi molekulyar kütlə ölçüsünü və paylanma diapazonunu əldə etmək üçün hesablanmışdır.

2. Reagentlər

Təcrübə suyu GB/T6682-də ikinci dərəcəli suyun spesifikasiyasına cavab verməlidir, xüsusi müddəalar istisna olmaqla, reagentlərin istifadəsi analitik cəhətdən təmizdir.

2.1 Reagentlərə asetonitril (xromatoqrafik cəhətdən təmiz), triflüorsirkə turşusu (xromatoqrafik cəhətdən təmiz),

2.2 Nisbi molekulyar kütlə paylanmasının kalibrləmə əyrisində istifadə olunan standart maddələr: insulin, mikopeptidlər, qlisin-qlisin-tirozin-arginin, qlisin-qlisin-qlisin

3 Cihaz və avadanlıq

3.1 Yüksək Performanslı Maye Xromatoqrafı (YPXX): UB detektoru və GPC məlumat emalı proqram təminatı ilə təchiz olunmuş xromatoqrafik iş stansiyası və ya inteqrator.

3.2 Səyyar fazalı vakuum filtrasiyası və deqazasiya qurğusu.

3.3 Elektron balans: dərəcəli dəyər 0.000 1q.

4 Əməliyyat addımı

4 Əməliyyat addımı
0.45

4.1 Xromatoqrafik şərtlər və sistem adaptasiyası təcrübələri (istinad şərtləri)

  • 4.1.1 Xromatoqrafik sütun: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (daxili diametr) və ya zülalların və peptidlərin təyini üçün uyğun olan oxşar xüsusiyyətlərə malik eyni tipli digər gel sütunları.
  • 4.1.2 Mobil faza: Asetonitril + su + triflüorsirkə turşusu = 20 + 80 + 0.1.
  • 4.1.3 Aşkarlama dalğa uzunluğu: 220 nm.
  • 4.1.4 Axın sürəti: 0,5 ml/dəq.
  • 4.1.5 Aşkarlama müddəti: 30 dəq.
  • 4.1.6 Nümunə inyeksiya həcmi: 20μL.
  • 4.1.7 Sütun temperaturu: otaq temperaturu.
  • 4.1.8 Xromatoqrafik sistemin aşkarlama tələblərinə cavab verməsi üçün yuxarıdakı xromatoqrafik şərtlər altında, tripeptid standartının (Qlisin-Qlisin-Qlisin) zirvələri əsasında hesablanmış gel xromatoqrafik sütun səmərəliliyinin, yəni nəzəri lövhə sayının (N) 10000-dən az olmaması şərti qoyulmuşdur.
  • 4.2 Nisbi molekulyar kütlə standart əyrilərinin istehsalı
  • Yuxarıda göstərilən 1 mq/ml kütlə konsentrasiyasına malik fərqli nisbi molekulyar kütlə peptid standart məhlulları mobil faza uyğunlaşdırması ilə hazırlanmış, müəyyən nisbətdə qarışdırılmış, sonra məsamə ölçüsü 0,2 μm~0,5 μm olan üzvi faza membranından süzülərək nümunəyə yeridilmiş və sonra standartların xromatoqramları əldə edilmişdir. Nisbi molekulyar kütlə kalibrləmə əyriləri və onların tənlikləri nisbi molekulyar kütlənin loqarifmini saxlama müddətinə qarşı çəkməklə və ya xətti reqressiya ilə əldə edilmişdir.

4.3 Nümunə müalicəsi

0.29

10 mq nümunəni 10 ml həcmli kolbada dəqiq şəkildə çəkin, bir az mobil faza əlavə edin, 10 dəqiqə ultrasəs çalxalayın ki, nümunə tamamilə həll olunsun və qarışdırılsın, mobil faza ilə tərəziyə qədər durulaşdırılsın və sonra məsamə ölçüsü 0,2μm~0,5μm olan üzvi faza membranından süzülsün və filtrat A.4.1-dəki xromatoqrafik şərtlərə uyğun olaraq təhlil edilsin.

  • 5. Nisbi molekulyar kütlə paylanmasının hesablanması
  • 4.3-də hazırlanmış nümunə məhlulu 4.1-in xromatoqrafik şərtləri altında təhlil edildikdən sonra, nümunənin nisbi molekulyar kütləsi və paylanma diapazonu, nümunənin xromatoqrafik məlumatlarını GPC məlumat emalı proqram təminatı ilə kalibrləmə əyrisi 4.2-yə yerləşdirməklə əldə edilə bilər. Müxtəlif peptidlərin nisbi molekulyar kütlələrinin paylanması aşağıdakı düstura əsasən pik sahəsinin normallaşdırılması metodu ilə hesablana bilər: X=A/A cəmi × 100
  • Düsturda: X - Nümunədəki ümumi peptiddə nisbi molekulyar kütlə peptidin kütlə payı, %;
  • A - Nisbi molekulyar kütləli peptidin pik sahəsi;
  • Cəmi A - hər bir nisbi molekulyar kütlə peptidin pik sahələrinin cəmi, bir onluq yerinə qədər hesablanır.
  • 6 Təkrarlanabilirlik
  • Təkrarlanma şərtləri altında əldə edilən iki müstəqil təyinetmə arasındakı mütləq fərq iki təyinetmənin arifmetik ortalamasının 15%-dən çox olmamalıdır.
  • Əlavə B: Sərbəst amin turşularının təyini üsulları
  • Standartın qəbulu: Q/320205 KAVN05-2016
  • 1.2 Reagentlər və materiallar
  • Buzlaq sirkə turşusu: analitik cəhətdən təmiz
  • Perxlor turşusu: 0.0500 mol/L
  • Göstərici: 0,1% kristal bənövşəyi indikator (buzlaq sirkə turşusu)
  • 2. Sərbəst amin turşularının təyini

Nümunələr 80°C-də 1 saat quruduldu.

Nümunəni təbii şəkildə otaq temperaturuna qədər soyuması və ya istifadəyə yararlı bir temperatura qədər soyuması üçün quru bir qaba qoyun.Təxminən 0,1 q nümunəni (0,001 q-a qədər dəqiqliklə) 250 ml quru konik kolbaya tökün.Nümunənin ətraf mühit nəmini udmasının qarşısını almaq üçün tez bir zamanda növbəti addıma keçin25 ml buzlaq sirkə turşusu əlavə edin və 5 dəqiqədən çox olmayaraq yaxşıca qarışdırın.2 damcı kristal bənövşəyi indikator əlavə edinMəhlul bənövşəyi rəngdən son nöqtəyə qədər dəyişənə qədər 0,0500 mol/L (±0,001) standart xlor turşusu titrləmə məhlulu ilə titrləyin.

İstehlak olunan standart məhlulun həcmini qeyd edin.

  • Boşluq testini eyni zamanda aparın.
  • 3. Hesablama və nəticələr
  • Reagentdəki sərbəst amin turşusu tərkibi X kütlə payı (%) ilə ifadə olunur və aşağıdakı düsturla hesablanır: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, aşağıdakı düsturla:
  • C - Standart perxlor turşusu məhlulunun litr başına mollarla konsentrasiyası (mol/L)
  • V1 - Nümunələrin standart perxlor turşusu məhlulu ilə titrlənməsi üçün istifadə olunan həcm, millilitrlərlə (ml).
  • Vol - Standart perxlor turşusu məhlulu ilə titrləmə blankı üçün istifadə olunan həcm, millilitrlərlə (ml);

M - Nümunənin kütləsi, qramla (q).

0.1445: 1.00 ml standart perxlor turşusu məhluluna ekvivalent olan amin turşularının orta kütləsi [c (HClO4) = 1.000 mol / L]. 4.2.3 Serium sulfat standart titrləmə məhlulu: konsentrasiyası c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, GB/T601-ə uyğun olaraq hazırlanmışdır.
Standartların qəbulu: Q/70920556 71-2024 1. Təyinetmə prinsipi (nümunə olaraq Fe) Amin turşusu dəmir komplekslərinin susuz etanolda həllolma qabiliyyəti çox aşağıdır və sərbəst metal ionları susuz etanolda həll olur, amin turşusu dəmir komplekslərinin xelatlaşma sürətini təyin etmək üçün susuz etanolda ikisi arasındakı həllolma fərqindən istifadə edilmişdir.
Düsturda: V1 - sınaq məhlulunun titrlənməsi üçün sərf olunan serium sulfat standart məhlulunun həcmi, ml; Susuz etanol; qalan hissəsi GB/T 27983-2011-dəki 4.5.2-ci bəndlə eynidir. 3. Təhlil addımları
Paralel olaraq iki sınaq keçirin. 103±2℃ temperaturda qurudulmuş nümunənin 0,1 q-nı 1 saat ərzində 0,0001 q dəqiqliklə çəkin, həll etmək üçün 100 ml susuz etanol əlavə edin, süzün, 100 ml susuz etanol ilə yuyulmuş qalığı ən azı üç dəfə süzün, sonra qalığı 250 ml konik kolbaya köçürün, GB/T27983-2011-in 4.5.3-cü bəndinə uyğun olaraq 10 ml sulfat turşusu məhlulu əlavə edin və sonra GB/T27983-2011-in 4.5.3-cü bəndinə uyğun olaraq "Həll olana qədər qızdırın və sonra soyumağa qoyun"-a uyğun olaraq aşağıdakı addımları yerinə yetirin. Boşluq sınağını eyni vaxtda aparın. 4. Ümumi dəmir tərkibinin təyini 4.1 Müəyyənləşdirmə prinsipi GB/T 21996-2008-dəki 4.4.1-ci bəndlə eynidir.

4.2. Reagentlər və məhlullar

4.2.1 Qarışıq turşu: 700 ml suya 150 ml sulfat turşusu və 150 ​​ml fosfor turşusu əlavə edin və yaxşıca qarışdırın. 4.2.2 Natrium difenilamin sulfonat indikator məhlulu: 5 q/L, GB/T603-ə uyğun olaraq hazırlanmışdır. 4.2.3 Serium sulfat standart titrləmə məhlulu: konsentrasiyası c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, GB/T601-ə uyğun olaraq hazırlanmışdır.
4.3 Təhlil addımları Paralel olaraq iki sınaq keçirin. 0,1 q nümunəni 020001 q dəqiqliklə çəkin, 250 ml-lik konik kolbaya qoyun, 10 ml qarışıq turşu əlavə edin, həll olduqdan sonra 30 ml su və 4 damcı natrium dianilin sulfonat indikator məhlulu əlavə edin və sonra GB/T21996-2008-in 4.4.2-ci bəndinə uyğun olaraq aşağıdakı addımları yerinə yetirin. Boşluq sınağını eyni vaxtda aparın. 4.4 Nəticələrin təmsil olunması Dəmirin kütlə payına görə amin turşusu dəmir komplekslərinin ümumi dəmir tərkibi X1, dəyəri % ilə ifadə olunur və (1) düsturuna əsasən hesablanmışdır:
X1=(V-V0)×C×M×10-3×100 V0 - boş məhlulun titrlənməsi üçün sərf olunan serium sulfat standart məhlulu, ml; V0 - boş məhlulun titrlənməsi üçün sərf olunan serium sulfat standart məhlulu, ml; C - Serium sulfat standart məhlulunun faktiki konsentrasiyası, mol/L5. Xelatlarda dəmir tərkibinin hesablanmasıDəmirin kütlə payına görə xelatdakı X2 dəmir miqdarı, % ilə ifadə edilən dəyər, aşağıdakı düsturla hesablanmışdır: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100
Düsturda: V1 - sınaq məhlulunun titrlənməsi üçün sərf olunan serium sulfat standart məhlulunun həcmi, ml; V2 - boş məhlulun titrlənməsi üçün sərf olunan serium sulfat standart məhlulu, ml;nom1-Nümunənin kütləsi, q. Paralel təyinetmə nəticələrinin arifmetik ortalamasını təyinetmə nəticələri kimi qəbul edin və paralel təyinetmə nəticələrinin mütləq fərqi 0,3%-dən çox deyil. 0.05585 - 1.00 ml serium sulfat standart məhlulu C[Ce(SO4)2.4H20]-yə ekvivalent olan qramla ifadə olunan dəmir dəmirin kütləsi = 1.000 mol/L.nom1-Nümunənin kütləsi, q. Paralel təyinetmə nəticələrinin arifmetik ortalamasını təyinetmə nəticələri kimi qəbul edin və paralel təyinetmə nəticələrinin mütləq fərqi 0,3%-dən çox deyil. 6. Xelasiya sürətinin hesablanmasıXelasiya sürəti X3, dəyəri % ilə ifadə olunur X3 = X2/X1 × 100Əlavə C: Zinpro-nun xelatlaşma sürətinin təyini üsulları

Standartın qəbulu: Q/320205 KAVNO7-2016

1. Reagentlər və materiallar

a) Buzlaq sirkə turşusu: analitik təmiz; b) Perxlor turşusu: 0.0500mol/L; c) İndikator: 0.1% kristal bənövşəyi indikator (buzlaq sirkə turşusu)

2. Sərbəst amin turşularının təyini

2.1 Nümunələr 80°C-də 1 saat quruduldu.

2.2 Nümunəni təbii şəkildə otaq temperaturuna qədər soyumaq və ya istifadəyə yararlı bir temperatura qədər soyumaq üçün quru bir qaba qoyun.

2.3 Təxminən 0,1 q nümunəni (0,001 q-a qədər dəqiqliklə) 250 ml quru konik kolbaya çəkin

2.4 Nümunənin ətraf mühit nəmini udmasının qarşısını almaq üçün tez bir zamanda növbəti addıma keçin.

2.5 25 ml buzlaq sirkə turşusu əlavə edin və 5 dəqiqədən çox olmayaraq yaxşıca qarışdırın.

2.5 25 ml buzlaq sirkə turşusu əlavə edin və 5 dəqiqədən çox olmayaraq yaxşıca qarışdırın.

0.00

2.6 2 damcı kristal bənövşəyi indikator əlavə edin.

0.00

2.7 Son nöqtə kimi rəngini dəyişmədən, məhlul bənövşəyi rəngdən yaşıl rəngə dəyişənə qədər 15 saniyə ərzində 0.0500mol/L (±0.001) standart xlor turşusu titrləmə məhlulu ilə titrləyin.

0.00

2.8 İstehlak olunan standart məhlulun həcmini qeyd edin.

2.5 25 ml buzlaq sirkə turşusu əlavə edin və 5 dəqiqədən çox olmayaraq yaxşıca qarışdırın.
0.09

2.9 Boşluq testini eyni zamanda aparın.

  • 3. Hesablama və nəticələr
  • Katalan dili
  • Physicochemical parameters

V1 - Nümunələrin standart perxlor turşusu məhlulu ilə titrlənməsi üçün istifadə olunan həcm, millilitrlərlə (ml).

Vol - Standart perxlor turşusu məhlulu ilə titrləmə blankı üçün istifadə olunan həcm, millilitrlərlə (ml);

c) Chelation rate: ≥ 95%

d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg

e) Lead: ≤ 5 mg/kg

f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg

g) Moisture content: ≤ 5.0%

h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh

Ünvan: Çin, Siçuan əyaləti, Çenqdu şəhəri, Pujiang qraflığı, Şouan şəhəri, Qinqpu yolu, 147 nömrəli ünvan

Sistinol (%)

Telefon: 86-18880477902

Məhsullar

0.00

Qeyri-üzvi iz mineralları

  • Üzvi iz mineralları
  • Suahili
  • Xüsusi xidmət
  • Tez keçidlər

Şirkət Profili

Application object Suggested dosage (g/t full-value material) Content in full-value feed (mg/kg) Efficacy
Qucarat Sorğu üçün klikləyin © Müəllif hüquqları - 2010-2025: Bütün hüquqlar qorunur. Sayt xəritəsi

ƏN YAXŞI AXTARIŞ

Telefon

Tel 86-18880477902 Yava dili E-poçt

Whatsapp

8618880477902 Çin dili Fransız dili
Bird Çin dili Fransız dili Alman

İspan dili

Aquatic animals Yapon Koreya dili Ərəb

Yunan

Türkcə İtalyan
Ruminant animal g/head day January 0.75   İndoneziya dili

Afrikaans

İsveç

0.00
0.09

Polşa

  • Bask
  • Katalan dili
  • Physicochemical parameters

Hind dili

Laos

c) Chelation rate: ≥ 95%

d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg

e) Lead: ≤ 5 mg/kg

f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg

g) Moisture content: ≤ 5.0%

h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh

Şona

Bolqar

  • Sebuano dili
  • This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
  • The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
  • Xorvat

Hollandca

Application object Urdu

Vyetnam

Content in full-value feed (mg/kg) Efficacy
Qucarat Haiti Hausa Kinyarvanda

Hmonq

Macar

Piglets and fattening pigs İqbo Yava dili Kannada

Khmer

Kürd

Qırğız Latın
Bird 300~400 45~60 Makedoniya

Malay

Malayalam

Aquatic animals 200~300 30~45 1. Promote growth, improve feed conversion;

2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality.

0.00
0.09

Norveç

  • Puştu
  • Appearance: brownish-yellow granules
  • Physicochemical parameters

Serb dili

Sesoto dili

c) Chelation rate: ≥ 95%

d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg

e) Lead: ≤ 5 mg/kg

f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg

g) Moisture content: ≤ 5.0%

h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh

Şona

Sindhi

This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;

Suahili

Tacik

Tamil

Teluqu

Tayland

Application object Urdu

Vyetnam

Content in full-value feed (mg/kg) Efficacy
Yidiş dili Yoruba Zulu Kinyarvanda

Oriya

Türkmən

Uyğur 250~400 37.5~60 1. Improving the immunity of piglets, reducing diarrhea and mortality;

2. Improving palatability, increasing feed intake, increasing growth rate and improving feed conversion;

3. Make the pig coat bright and improve the carcass quality and meat quality.

Bird 300~400 45~60 1. Improve feather glossiness;

2. improve the laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, and strengthen the coloring ability of egg yolk;

3. Improve anti-stress ability and reduce mortality;

4. Improve feed conversion and increase growth rate.

Aquatic animals January 300 45 1. Promote growth, improve feed conversion;

2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality.

Ruminant animal g/head day 2.4   1. Improve milk yield, prevent mastitis and foof rot, and reduce somatic cell content in milk;

2. Promote growth, improve feed conversion and improve meat quality.

0.00
0.09

4. Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade

  • Product Name: Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
  • Appearance: brownish-yellow granules
  • Physicochemical parameters

a) Mn: ≥ 10.0%

b) Total amino acids: ≥ 19.5%

c) Chelation rate: ≥ 95%

d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg

e) Lead: ≤ 5 mg/kg

f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg

g) Moisture content: ≤ 5.0%

h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh

n=0, 1,2,...indicates chelated manganese for dipeptides, tripeptides, and tetrapeptides

Characteristics of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade

This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;

This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;

The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;

The product can improve the growth rate, improve feed conversion and health status significantly; and improve the laying rate, hatching rate and healthy chick rate of breeding poultry obviously;

Manganese is necessary for bone growth and connective tissue maintenance. It is closely related to many enzymes; and participates in carbohydrate, fat and protein metabolism, reproduction and immune response.

Usage and Efficacy of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade

Application object Suggested dosage (g/t full-value material) Content in full-value feed (mg/kg) Efficacy
Breeding pig 200~300 30~45 1. Promote the normal development of sexual organs and improve sperm motility;

2. Improve the reproductive capacity of breeding pigs and reduce reproductive obstacles.

Piglets and fattening pigs 100~250 15~37.5 1. It is beneficial to improve immune functions, and improve anti-stress ability and disease resistance;

2. Promote growth and improve feed conversion significantly;

3. Improve meat color and quality, and improve lean meat percentage.

Bird 250~350 37.5~52.5 1. Improve anti-stress ability and reduce mortality;

2. Improve laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, improve eggshell quality and reduce shell breaking rate;

3. Promote bone growth and reduce the incidence of leg diseases.

Aquatic animals 100~200 15~30 1. Promote growth and improve its anti-stress ability and disease resistance;

2. Improve sperm motility and hatching rate of fertilized eggs.

Ruminant animal g/head day Cattle 1.25   1. Prevent fatty acid synthesis disorder and bone tissue damage;

2. Improve reproductive capacity, prevent abortion and postpartum paralysis of female animals, reduce the mortality of calves and lambs,

and increase the newborn weight of young animals.

Goat 0.25  

Part 6 FAB of Small Peptide-mineral Chelates

0.00
S/N F: Functional attributes A: Competitive differences B: Benefits brought by competitive differences to users
1.52 Selectivity control of raw materials Select pure plant enzymatic hydrolysis of small peptides High biological safety, avoiding cannibalism
2 Directional digestion technology for double protein biological enzyme High proportion of small molecular peptides More "targets", which are not easy to saturation, with high biological activity and better stability
3 Advanced pressure spray & drying technology Granular product, with uniform particle size, better fluidity, not easy to absorb moisture Ensure easy to use, more uniform mixing in complete feed
Low water content (≤ 5%), which greatly reduces the influence caused by vitamins and enzyme preparations Improve the stability of feed products
4 Advanced production control technology Totally enclosed process, high degree of automatic control Safe and stable quality
5 Advanced quality control technology Establish and improve scientific and advanced analytical methods and control means for detecting factors affecting product quality, such as acid-soluble protein, molecular weight distribution, amino acids and chelating rate Ensure quality, ensure efficiency and improve efficiency

Part 7 Competitor Comparison

Standard VS Standard

Valin (%)
1.14
1.14

Comparison of peptide distribution and chelation rate of products

Sustar's products Proportion of small peptides(180-500) Zinpro's products Proportion of small peptides(180-500)
AA-Cu ≥74% AVAILA-Cu 78%
AA-Fe ≥48% AVAILA-Fe 59%
AA-Mn ≥33% AVAILA-Mn 53%
AA-Zn ≥37% AVAILA-Zn 56%

 

Sustar's products Chelation rate Zinpro's products Chelation rate
AA-Cu 94.8% AVAILA-Cu 94.8%
AA-Fe 95.3% AVAILA-Fe 93.5%
AA-Mn 94.6% AVAILA-Mn 94.6%
AA-Zn 97.7% AVAILA-Zn 90.6%

The ratio of small peptides of Sustar is slightly lower than that of Zinpro, and the chelation rate of Sustar's products is slightly higher than that of Zinpro's products.

Comparison of the content of 17 amino acids in different products

Name of

amino acids

Sustar's Copper

Amino Acid Chelate

Feed Grade

Zinpro's

AVAILA

copper

Sustar's Ferrous Amino Acid C

helate Feed

Grade

Zinpro's AVAILA

iron

Sustar's Manganese

Amino Acid Chelate

Feed Grade

Zinpro's AVAILA

manganese

Sustar's Zinc

Amino Acid

Chelate Feed Grade

Zinpro's AVAILA

zinc

aspartic acid (%) 1.88 0.72 1.50 0.56 1.78 1.47 1.80 2.09
glutamic acid (%) 4.08 6.03 4.23 5.52 4.22 5.01 4.35 3.19
Serine (%) 0.86 0.41 1.08 0.19 1.05 0.91 1.03 2.81
Histidine (%) 0.56 0.00 0.68 0.13 0.64 0.42 0.61 0.00
Glycine (%) 1.96 4.07 1.34 2.49 1.21 0.55 1.32 2.69
Threonine (%) 0.81 0.00 1.16 0.00 0.88 0.59 1.24 1.11
Arginine (%) 1.05 0.78 1.05 0.29 1.43 0.54 1.20 1.89
Alanine (%) 2.85 1.52 2.33 0.93 2.40 1.74 2.42 1.68
Tyrosinase (%) 0.45 0.29 0.47 0.28 0.58 0.65 0.60 0.66
Cystinol (%) 0.00 0.00 0.09 0.00 0.11 0.00 0.09 0.00
Valine (%) 1.45 1.14 1.31 0.42 1.20 1.03 1.32 2.62
Methionine (%) 0.35 0.27 0.72 0.65 0.67 0.43 January 0.75 0.44
Phenylalanine (%) 0.79 0.41 0.82 0.56 0.70 1.22 0.86 1.37
Isoleucine (%) 0.87 0.55 0.83 0.33 0.86 0.83 0.87 1.32
Leucine (%) 2.16 0.90 2.00 1.43 1.84 3.29 2.19 2.20
Lysine (%) 0.67 2.67 0.62 1.65 0.81 0.29 0.79 0.62
Proline (%) 2.43 1.65 1.98 0.73 1.88 1.81 2.43 2.78
Total amino acids (%) 23.2 21.4 22.2 16.1 22.3 20.8 23.9 27.5

Overall, the proportion of amino acids in Sustar's products is higher than that in Zinpro's products.

Part 8 Effects of use

Effects of different sources of trace minerals on the production performance and egg quality of laying hens in the late laying period

1.31

Production Process

Production Process
  • Targeted chelation technology
  • Shear emulsification technology
  • Pressure spray & drying technology
  • Refrigeration & dehumidification technology
  • Advanced environmental control technology

Appendix A: Methods for the Determination of relative molecular mass distribution of peptides

Adoption of standard: GB/T 22492-2008

1 Test Principle:

It was determined by high performance gel filtration chromatography. That is to say, using porous filler as stationary phase, based on the difference in the relative molecular mass size of the sample components for separation, detected at the peptide bond of the ultraviolet absorption wavelength of 220nm, using the dedicated data processing software for the determination of relative molecular mass distribution by gel filtration chromatography (i.e., the GPC software), the chromatograms and their data were processed, calculated to get the size of the relative molecular mass of the soybean peptide and the distribution range.

2. Reagents

The experimental water should meet the specification of secondary water in GB/T6682, the use of reagents, except for special provisions, are analytically pure.

2.1 Reagents include acetonitrile (chromatographically pure), trifluoroacetic acid (chromatographically pure),

2.2 Standard substances used in the calibration curve of relative molecular mass distribution: insulin, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine

3 Instrument and equipment

3.1 High Performance Liquid Chromatograph (HPLC): a chromatographic workstation or integrator with a UV detector and GPC data processing software.

3.2 Mobile phase vacuum filtration and degassing unit.

3.3 Electronic balance: graduated value 0.000 1g.

4 Operating steps

4.1 Chromatographic conditions and system adaptation experiments (reference conditions)

4.1.1 Chromatographic column: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (inner diameter) or other gel columns of the same type with similar performance suitable for the determination of proteins and peptides.

4.1.2 Mobile phase: Acetonitrile + water + trifluoroacetic acid = 20 + 80 + 0.1.

4.1.3 Detection wavelength: 220 nm.

4.1.4 Flow rate: 0.5 mL/min.

4.1.5 Detection time: 30 min.

4.1.6 Sample injection volume: 20μL.

4.1.7 Column temperature: room temperature.

4.1.8 In order to make the chromatographic system meet the detection requirements, it was stipulated that under the above chromatographic conditions, the gel chromatographic column efficiency, i.e., the theoretical number of plates (N), was not less than 10000 calculated on the basis of the peaks of the tripeptide standard (Glycine-Glycine-Glycine).

4.2 Production of relative molecular mass standard curves

The above different relative molecular mass peptide standard solutions with a mass concentration of 1 mg / mL were prepared by mobile phase matching, mixed in a certain proportion, and then filtered through an organic phase membrane with the pore size of 0.2 μm~0.5 μm and injected into the sample, and then the chromatograms of the standards were obtained. Relative molecular mass calibration curves and their equations were obtained by plotting the logarithm of relative molecular mass against retention time or by linear regression.

4.3 Sample treatment

Accurately weigh 10mg of sample in a 10mL volumetric flask, add a little mobile phase, ultrasonic shaking for 10min, so that the sample is fully dissolved and mixed, diluted with mobile phase to the scale, and then filtered through an organic phase membrane with a pore size of 0.2μm~0.5μm, and the filtrate was analyzed according to the chromatographic conditions in A.4.1.

5. Calculation of relative molecular mass distribution

After analyzing the sample solution prepared in 4.3 under the chromatographic conditions of 4.1, the relative molecular mass of the sample and its distribution range can be obtained by substituting the chromatographic data of the sample into the calibration curve 4.2 with GPC data processing software. The distribution of the relative molecular masses of the different peptides can be calculated by the peak area normalization method, according to the formula: X=A/A total×100

In the formula: X - The mass fraction of a relative molecular mass peptide in the total peptide in the sample, %;

A - Peak area of a relative molecular mass peptide;

Total A - the sum of the peak areas of each relative molecular mass peptide, calculated to one decimal place.

6 Repeatability

The absolute difference between two independent determinations obtained under conditions of repeatability shall not exceed 15% of the arithmetic mean of the two determinations.

Appendix B: Methods for the Determination of Free Amino Acids

Adoption of standard: Q/320205 KAVN05-2016

1.2 Reagents and materials

Glacial acetic acid: analytically pure

Perchloric acid: 0.0500 mol/L

Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)

2. Determination of free amino acids

The samples were dried at 80°C for 1 hour.

Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.

Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask.

Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture

Add 25 mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5 min.

Add 2 drops of crystal violet indicator

Titrate with 0.0500 mol / L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to the end point.

Record the volume of standard solution consumed.

Carry out the blank test at the same time.

3. Calculation and results

The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%) and is calculated according to the formula: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, in tne formula:

C - Concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)

V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).

Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);

M - Mass of the sample, in grams (g ).

0.1445: Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].

Appendix C: Methods for the Determination of Sustar's chelation rate

Adoption of standards: Q/70920556 71-2024

1. Determination principle (Fe as an example)

Amino acid iron complexes have very low solubility in anhydrous ethanol and free metal ions are soluble in anhydrous ethanol, the difference in solubility between the two in anhydrous ethanol was utilized to determine the chelation rate of amino acid iron complexes.

2. Reagents & Solutions

Anhydrous ethanol; the rest is the same as clause 4.5.2 in GB/T 27983-2011.

3. Steps of analysis

Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of the sample dried at 103±2℃ for 1 hour, accurate to 0.0001g, add 100mL of anhydrous ethanol to dissolve, filter, filter residue washed with 100mL of anhydrous ethanol for at least three times, then transfer the residue into a 250mL conical flask, add 10mL of sulfuric acid solution according to clause 4.5.3 in GB/T27983-2011, and then perform the following steps according to clause 4.5.3 “Heat to dissolve and then let cool” in GB/T27983-2011. Carry out the blank test at the same time.

4. Determination of total iron content

4.1 The principle of determination is the same as clause 4.4.1 in GB/T 21996-2008.

4.2. Reagents & Solutions

4.2.1 Mixed acid: Add 150mL of sulfuric acid and 150mL of phosphoric acid to 700mL of water and mix well.

4.2.2 Sodium diphenylamine sulfonate indicator solution: 5g/L, prepared according to GB/T603.

4.2.3 Cerium sulfate standard titration solution: concentration c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, prepared according to GB/T601.

4.3 Steps of analysis

Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of sample, accurate to 020001g, place in a 250mL conical flask, add 10mL of mixed acid, after dissolution, add 30ml of water and 4 drops of sodium dianiline sulfonate indicator solution, and then perform the following steps according to clause 4.4.2 in GB/T21996-2008. Carry out the blank test at the same time.

4.4 Representation of results

The total iron content X1 of the amino acid iron complexes in terms of mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to formula (1):

X1=(V-V0)×C×M×10-3×100

In the formula: V - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;

V0 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;

C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L

5. Calculation of iron content in chelates

The iron content X2 in the chelate in terms of the mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to the formula: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100

In the formula: V1 - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;

V2 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;

C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L;

0.05585 - mass of ferrous iron expressed in grams equivalent to 1.00 mL of cerium sulfate standard solution C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L.

m1-Mass of the sample, g. Take the arithmetic mean of the parallel determination results as the determination results, and the absolute difference of the parallel determination results is not more than 0.3%.

6. Calculation of chelation rate

Chelation rate X3, the value expressed in %, X3 = X2/X1 × 100

Appendix C: Methods for the Determination of Zinpro's chelation rate

Adoption of standard: Q/320205 KAVNO7-2016

1. Reagents and materials

a) Glacial acetic acid: analytically pure; b) Perchloric acid: 0.0500mol/L; c) Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)

2. Determination of free amino acids

2.1 The samples were dried at 80°C for 1 hour.

2.2 Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.

2.3 Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask

2.4 Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture.

2.5 Add 25mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5min.

2.6 Add 2 drops of crystal violet indicator.

2.7 Titrate with 0.0500mol/L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to green for 15s without changing color as the end point.

2.8 Record the volume of standard solution consumed.

2.9 Carry out the blank test at the same time.

3. Calculation and results

The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%), calculated according to formula (1): X=C×(V1-V0) ×0.1445/M×100%...... .......(1)

In the formula: C - concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)

V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).

Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);

M - Mass of the sample, in grams (g ).

0.1445 - Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].

4. Calculation of chelation rate

The chelation rate of the sample is expressed as mass fraction (%), calculated according to formula (2): chelation rate = (total amino acid content - free amino acid content)/total amino acid content×100%.


Post time: Sep-17-2025